ВПЛИВ СПЕРМІНУ ТА АМІНОГУАНІДИНУ НА МОРФОФУНКЦІОАЛЬНІ ХАРАКТЕРИСТИКИ КЛІТИН РАКУ ПЕРЕДМІХУРОВОЇ ЗАЛОЗИ ЛЮДИНИ ЛІНІЇ LNCaP
DOI:
https://doi.org/10.15407/oncology.2023.01.024Ключові слова:
аміногуанідин, апоптоз, лінія клітин LNCaP, мітоз, спермінАнотація
Мета: дослідити інгібуючий вплив сперміну (Спн) та модифікуючу дію аміногуанідину (АГ) на структурно-функціональні характеристики клітин раку передміхурової залози (РПЗ) людини лінії LNCaP в залежності від особливостей їх застосування. Об’єкт і методи: дослідження проведені in vitro на клітинах РПЗ людини гормонозалежної лінії LNCaP. Виживаність клітин визначали методом виключення живими клітинами вітального барвника трипанового синього у концентрації 0,08%. Концентрація застосованого у дослідженні Спн становила 1,5 і 5,0 мМ , а АГ у комбінації із Спн – 1,5 мМ. Зміни морфології клітин лінії LNCaP оцінювали за допомогою методу світлооптичної мікроскопії на фіксованих цитологічних препаратах клітин, вирощених на покривних скельцях, з подальшим забарвленням гематоксиліном та еозином. Результати: встановлено, що Спн в концентрації 1,5 мМ проявляє виражений інгібуючий ефект на ріст клітин РПЗ людини лінії LNCaP, який полягає у зниженні їх виживаності, а при застосуванні цього чинника в концентрації 5,0 мМ – у повній загибелі. Наявність в культуральному середовищі АГ (1,5 мМ ) сприяє суттєвому відновленню виживаності клітин. Висновки: Спн зі збільшенням його концентрації від 1,5 мМ до 5,0 мМ, імовірно, призводить до вступу клітин LNCaP в апоптоз. У сублетальних концентраціях Спн знижує синтетичну і пригнічує мітотичну активність клітин LNCaP, у той час як АГ демонструє певну протективну дію щодо вказаних показників.
Посилання
Peng Q, Wong CYP, Cheuk IW-y, et al. The Emerging Clinical Role of Spermine in Prostate Cancer. Int J Mol Sci 2021; 22: 4382. https://doi.org/10.3390/ijms22094382.
Andersen MK, Giskeødegård GF, Tessem M-B. Metabolic alterations in tissues and biofluids of prostate cancer ПАtients. Current Opinion in Endocrine and Metabolic Research 2020; 10: 23–8. https://doi.org/10.1016/j.coemr.2020.02.003.
Metabolic alterations in tissues and biofluids of ПАtients with prostate cancer // Current Opinion in Endocrine and Metabolic Research 2020; 10: 23–28. https://doi.org/10.1016/j.coemr.2020.02.003.
Huang W, Eickhoff JC, Mehraein-Ghomi F, et al. Expression of spermidine/spermine N1-acetyl transferase (SSAT) in human prostate tissues is related to prostate cancer progression and metastasis. Prostate 2015; 75: 1150–1159. doi: 10.1002/pros.22996.
Zabala-Letona A, Arruabarrena-Aristorena A, Martín-Martín N, et al. mTORC1-dependent AMD1 regulation sustains polyamine metabolism in prostate cancer. Nat 2017; 547(7661): 109–13. doi: 10.1038/nature22964
Smith R, Litwin M, Lu Y, Zetter B. Identification of an endogenous inhibitor of prostate carcinoma cell growth. Nat Med 1995; 1: 1040 – 5. doi: 10.1038/nm1095-1040
Koike C., Chao D.T., Zetter B.R. Sensitivity to Polyamine – induced Growth Arrest Correlates with Antizyme Induction in Prostate Carcinoma Cells. Canc Res 1999; 59: 6109 – 12.
Yanish YuV, Prylutskyi MP, Zaletok SP. Electrokinetic characteristics of human prostate cancer LNCaP cell line. Oncol 2022; 24 (3): 163 – 8 (in Ukrainian). doi: 10.32471/oncology.2663-7928.t-24-3-2022-g.10728
Lakin GF. Biometrics 1990; M: Higher School, 352 p (in Russian).
Seo MJ, Lee DM, Kim IY, et al. Gambogic acid triggers vacuolization-associated cell death in cancer cells via disruption of thiol proteostasis // Cell Death Dis 2019; 10: 187. https://doi.org/10.1038/s41419-019-1360-4.
Lee WJ, Chien MH, Chow JM, et al. Nonautophagic cytoplasmic vacuolation death induction in human PC-3M prostate cancer by curcumin through reactive oxygen species -mediated endoplasmic reticulum stress. Sci Rep 2015; 27 (5): 10420. doi: 10.1038/srep1042.
