Роль специфічних ізоферментів фосфоліпази D у реалізації біологічного ефекту жасмонової кислоти в реакціях рослин на дію стресів
DOI:
https://doi.org/10.15407/dopovidi2018.10.095Ключові слова:
Arabidopsis thaliana, ізофермент, жасмонова кислота, кадмій, мідь, рослини, фосфатидна кислота, фосфоліпаза DАнотація
Досліджено роль специфічних ізоферментів фосфоліпази D (ФЛD) в реалізації біологічного ефекту жас монової кислоти в реакціях клітин рослин на дію іонів важких металів. Здійснено аналіз ростових реакцій та активності ферментів ФЛD in vivo у трансгенних рослин Arabidopsis thaliana з метою вста новлення дії ряду ізоферментів ФЛD в реалізації біологічного ефекту жасмонової кислоти в процесі формування стійкості до впливу іонів важких металів — міді та кадмію. Отримані результати вказують на участь ізоферментів ФЛDβ на ранніх етапах дії жасмонової кислоти.
Завантаження
Посилання
Dovgalyuk, A. (2013). Environmental contamination by toxic metals and its indication by plant test systems. Biol. studii, 7, No. 1, pp. 197-204 (in Ukrainian). doi: https://doi.org/10.30970/sbi.0701.269
Hong, Y., Zhao, J., Guo, L., Kim, S. C., Deng, X., Wang, G., Zhang, G., Li, M. & Wang, X. (2016). Plant phospholipases D and C and their diverse functions in stress responses (Review). Prog. Lipid Res., 62, pp. 55-74. doi: https://doi.org/10.1016/j.plipres.2016.01.002
Iakimova, E. T., Michaeli, R. & Woltering, E. J. (2013). Involvement of phospholipase D-related signal transduction in chemical-induced programmed cell death in tomato cell cultures. Protoplasma, 250, No. 5, pp. 1169-1183. doi: https://doi.org/10.1007/s00709-013-0497-8
Zhao, J., Wang, C., Bedair, M., Welti, R., Sumner, L. W., Baxter, I. & Wang, X. (2011). Suppression of phospholipase Dγs confers increased aluminum resistance in Arabidopsis thaliana. PLoS ONE, 6, No. 12, e28086. doi: https://doi.org/10.1371/journal.pone.0028086
Maksymiec, W. & Krupa, Z. (2002). Jasmonic acid and heavy metals in Arabidopsis plants — a similar physiological response to both stressors? J. Plant Physiol., 159, No. 5, pp. 509-515. doi: https://doi.org/10.1078/0176-1617-00610
Cenzano, A., Cantoro, R., Racagni, G., De Los Santos-Briones, C., Hernández-Sotomayor, T. & Abdala, G. (2008). Phospholipid and phospholipase changes by jasmonic acid during stolon to tuber transition of potato. Plant Growth Regul., 56, No. 3, pp. 307-316. doi: https://doi.org/10.1007/s10725-008-9311-6
Profotová, B., Burketová, L., Novotná, Z., Martinec, J. & Valentová, O. (2006). Involvement of phospholipases C and D in early response to SAR and ISR inducers in Brassica napus plants. Plant Physiol. Biochem., 44, No. 2-3, pp. 143-151. doi: https://doi.org/10.1016/j.plaphy.2006.02.003
Altúzar-Molina, A. R., Muñoz-Sánchez, J. A., Vázquez-Flota, F., Monforte-González, M., Racagni-Di Palma, G. & Hernández-Sotomayor, S. M. (2011). Phospholipidic signaling and vanillin production in response to salicylic acidand methyl jasmonate in Capsicum chinense J. cells. Plant Phys. Biochem., 49, No. 2, pp. 151-158. doi: https://doi.org/10.1016/j.plaphy.-2010.11.005
Chen, J., Sonobe, K., Ogawa, N., Masuda, S., Nagatani, A., Kobayashi, Y. & Ohta, H. (2013). Inhibition of arabidopsis hypocotyl elongation by jasmonates is enhanced under red light in phytochrome B dependent manner. J. Plant Res., 126, No. 1, pp. 161-168. doi: https://doi.org/10.1007/s10265-012-0509-3
Hodges, D. M., DeLong, J. M., Forney, C. F. & Prange, R. K. (1999). Improving the thiobarbituric acid-reactive-substances assay for estimating lipid peroxidation in plant tissues containing anthocyanin and other interfering compounds. Planta, 207, pp. 604-611. doi: https://doi.org/10.1007/s10265-012-0509-3
Pejchar, P., Potocký, M., Novotná, Z., Veselková, S., Kocourková, D., Valentová, O., Schwarzerová, K., Martinec, J. (2010). Aluminium ions inhibit the formation of diacylglycerol generated by phosphatidylcholine-hydrolysing phospholipase C in tobacco cells. New Phytol., 188, pp. 150-160. doi: https://doi.org/10.1111/j.1469-8137.2010.03349.x
Maksymiec, W., Wójcik, M. & Krupa, Z. (2007). Variation in oxidative stress and photochemical activity in Arabidopsis thaliana leaves subjected to cadmium and excess copper in the presence or absence of jasmonate and ascorbate. Chemosphere, 66, No. 3, pp. 421-427. doi: https://doi.org/10.1007/s10265-012-0509-3
Zhao, J., Devaiah, S. P., Wang, C., Li, M., Welti, R. & Wang, X. (2013). Arabidopsis phospholipase Dβ1 modulates defense responses to bacterial and fungal pathogens. New Phytol., 199, No. 1, pp. 228-240. doi: https://doi.org/10.1111/nph.12256
Zhang, Q., Berkey, R., Blakeslee, J. J., Lin, J., Ma, X., King, H., Liddle, A., Guo, L., Munnik, T., Wang, X. & Xiao, S. (2018). Arabidopsis phospholipase Dα1 and Dδ oppositely modulate EDS1- and SA-independent basal resistance against adapted powdery mildew. J. Exp. Bot. doi: https://doi.org/0.1093/jxb/ery146
##submission.downloads##
Опубліковано
Як цитувати
Номер
Розділ
Ліцензія
Авторське право (c) 2024 Доповіді Національної академії наук України
Ця робота ліцензується відповідно до Creative Commons Attribution-NonCommercial 4.0 International License.
