Ефективний метод генетичної трансформації картоплі та створення in vitro колекції її сортів з генами, що підвищують стійкість до абіотичних і біотичних стресів

Автор(и)

  • О.О. Овчаренко Інститут клітинної біології та генетичної інженерії НАН України, Київ, Україна https://orcid.org/0000-0003-4874-5258
  • В.А. Рудас Інститут клітинної біології та генетичної інженерії НАН України, Київ, Україна https://orcid.org/0000-0001-5643-1406
  • Н.Л. Щербак Інститут клітинної біології та генетичної інженерії НАН України, Київ, Україна https://orcid.org/0000-0002-2478-8408
  • О.М. Кищенко Інститут клітинної біології та генетичної інженерії НАН України, Київ, Україна https://orcid.org/0000-0003-4768-2822
  • Б.В. Моргун Інститут клітинної біології та генетичної інженерії НАН України, Київ, Україна https://orcid.org/0000-0001-7041-6894
  • М.В. Кучук Інститут клітинної біології та генетичної інженерії НАН України, Київ, Україна https://orcid.org/0000-0001-7365-7474

DOI:

https://doi.org/10.15407/dopovidi2026.01.050

Ключові слова:

генетична інженерія, Agrobacterium tumefaciens, Solanum tuberosum, гетерологічні гени.

Анотація

Сьогодні різноманітні сільськогосподарські види рослин зазнають впливу численних стресових факторів довкілля — засолення, посухи, екстремальних температур, дефіциту або надлишку мінеральних речовин тощо. Картопля (Solanum tuberosum) є важливою продовольчою, кормовою та технічною культурою в Україні й усьому світі. Поліплоїдія культурного Solanum tuberosum є серйозною перешкодою в його селекції. Порівняно з традиційною селекцією генетична інженерія має певні переваги у підвищенні стійкості цієї культури до стресових впливів і дає змогу швидко створювати стійкі рослини на основі наявних комерційних сортів. Стратегії сталого виробництва потребують оптимізації чинних протоколів трансформації картоплі та перенесення генів, що підвищують стійкість до стресів, є актуальними і становлять мету дослідження. Гени двох ізоформ вакуолярного Na+/H+-антипортера з ячменю (HvNHX2 і HvNHX3) сприяють підвищенню стійкості до посухи, засолення та залуженння ґрунту. Короткий антисенсовий сегмент гена проліндегідрогенази (PDH ex1) з Arabidopsis thaliana завдяки частковому пригніченню гена PDH знижує активність цього ферменту, що зумовлює підвищення вмісту проліну і стійкості трансгенних рослин до посухи, холоду, важких металів та засолення. Ген цитохрому P450 з кори наднирників великої рогатої худоби (CYP11A1) підвищує врожайність і стійкість до фітопатогенних грибів. Гени екстраклітинної РНКазицинії (ZRNase) та панкреатичної РНКази бика (bov) підвищують стійкість рослин до вірусних інфекцій. Комерційні сорти картоплі було трансформовано за допомогою Agrobacterium tumefacience з використанням векторів зі згаданими вище генами. Отримана колекція трансгенних ліній картоплі є цінним матеріалом для подальшого дослідження стресостійкості і дає змогу порівняти вплив різних чужорідних генів на основі низки комерційних сортів.

Завантаження

Дані завантаження ще не доступні.

Посилання

Vinterhalter, D., Zdravković-Korać, S., Mitić, N., Dragićević, I., Cingel, A., Raspor, M. & Ninković, S. (2008). Protocols for Agrobacterium-mediated transformation of potato. Fruit, Veg. Cereal Sci. Biotech., 2, Spec. Iss. 1: Potato I, pp. 1-15. Retrieved from https://www.researchgate.net/publication/328732619_Protocols_for_ Agrobacterium_mediated_transformation_of_potato

del Mar Martínez-Prada, M., Curtin, S. J. & Gutiérrez-González, J. J. (2021). Potato improvement through genetic engineering. GM Crops Food, 12, No. 1, pp. 479-496. https://doi.org/10.1080/21645698.2021.1993688

Rather, G. A., Ayzenshtat, D., Teper-Bamnolker, P., Kumar, M., Forotan, Z., Eshel, D. & Bocobza, S. (2022). Advances in protoplast transfection promote efficient CRISPR/Cas9-mediated genome editing in tetraploid potato. Planta, 256, No. 1, 14. https://doi.org/10.1007/s00425-022-03933-z

Kikuchi, A., Huynh, H. D., Endo, T. & Watanabe, K. (2015). Review of recent transgenic studies on abiotic stress tolerance and future molecular breeding in potato. Breed. Sci., 65, No. 1, pp. 85-102. https://doi.org/10.1270/jsbbs.65.85

Sakhno, L. O., Gerasymenko, I. M., Komarnitsskii, I. K., Sheludko, Y. V. & Goldenkova-Pavlova, I. V. (2012). Creation of glyphosate-resistant Brassica napus L. plants expressing DesC desaturase of cyanobacterium Synechococcus vulcanus. Biopolym. Cell, 28, No. 6, pp. 449-455. https://doi.org/10.7124/bc.000135

Sakhno, L. O., Slyvets, M. S. & Kuchuk, M. V. (2014) cyp11A1 Canola plants under short time heat stress conditions. Cytol. Genet., 48, pp. 279-284. https://doi.org/10.3103/S0095452714050090

Tishchenko, O. M., Komisarenko, A. G., Mykhalska, S. I., Sergeeva, L. E., Adamenko, N. I., Morgun, B. V. & Kochetov, A. V. (2014). Agrobacterium-mediated transformation of sunflower (Helianthus annuus L.) in vitro and in planta using LBA4404 strain harboring binary vector pBi2E with dsRNA-suppressor of proline dehydrogenase gene. Cytol. Genet., 48, No. 4, pp. 218-226. https://doi.org/10.3103/S0095452714040094

Potrokhov, A., Sosnovska, D., Ovcharenko, O., Budzanivska, I., Rudas, V. & Kuchuk, M. (2021). Increased ribonuclease activity in Solanum tuberosum L. transformed with heterologous genes of apoplastic ribonucleases as a putative approach for production of virus resistant plants. Turk. J. Biol., 45, No. 1, pp. 79-87. https://doi. org/10.3906/biy-2007-87

Potrokhov, A. O. & Ovcharenko, O. O. (2024). Strategies for engineering of virus-resistant plants: focus on RNases. Cytol. Genet., 58, pp. 99-114. https://doi.org/10.3103/S0095452724020099

Ovcharenko, O., Zholobak, N., Rudas, V. & Kuchuk, M. (2025). Plant systems as platforms for the production ofinterferonalphaanditsapplication.Cytol.Genet.,59,pp.622-633.https://doi.org/10.3103/S0095452725060088

Murashige, T. & Skoog, F. (1962). A revised medium for rapid growth and bio assays with tobacco tissue cultures. Physiol. Plant., 15, No. 3, pp. 473-497. https://doi.org/10.1111/j.1399-3054.1962.tb08052

Bayat, F., Shiran, B. & Belyaev, D. V. (2011). Overexpression of HvNHX2, a vacuolar Na+/H+ antiporter gene

from barley, improves salt tolerance in Arabidopsis thaliana. Aust. J. Crop Sci., 5, No. 4, pp. 428-432. Retrieved from https://www.cropj.com/bayat_5_4_2011_428_432.pdf

Krivosheeva, A. B., Varlamova, T. V., Yurieva, N. O., Sobol’kova, G. I., Kholodova, V. P. & Belyaev, D. V. (2014). Potato transformation with the HvNHX3 gene and the improvement of transformant salt tolerance. Russ. J. Plant Physiol., 61, pp. 792-800. https://doi.org/10.1134/S1021443714060119

Trifonova, E. A., Sapotsky, M. V., Komarova, M. L., Scherban A. B., Shumny V. K., Polyakova A. M., Lapshi- na L. A., Kochetov A. V. & Malinovsky V. I. (2007). Protection of transgenic tobacco plants expressing bovine pancreatic ribonuclease against tobacco mosaic virus. Plant Cell Rep., 26, No. 7, pp. 1121-1126. https://doi. org/10.1007/s00299-006-0298-z

Trifonova, E. A., Romanova, A. V., Sangaev, S. S., Sapotsky, M. V., Malinovsky, V. I. & Kochetov, A. V. (2012). Inducible expression of the gene of Zinnia elegans coding for extracellular ribonuclease in Nicotiana tabacum plants. Biol. Plant., 56, pp. 571-574. https://doi.org/10.1007/s10535-011-0206-4

Berdichevets, I. N., Shimshilashvili, H. R., Gerasymenko, I. M., Sindarovska, Y. R., Sheludko, Y. V. & Goldenkova- Pavlova, I. V. (2010). Multiplex PCR assay for detection of recombinant genes encoding fatty acid desaturases fused with lichenase reporter protein in GM plants. Anal. Bioanal. Chem., 397, No. 6, pp. 2289-2293. https:// doi.org/10.1007/s00216-010-3770-0

Bertani, G. (1951). Studies on lysogenesis. I. The mode of phage liberation by lysogenic Escherichia coli. J. Bacteriol., 62, No. 3, pp. 293-300. https://doi.org/10.1128/jb.62.3.293-300.1951

Doyle, J. J. & Doyle, J. L. (1990). Isolation of plant DNA from fresh tissue. Focus, 12, No. 1, pp. 13-15.

Rudas, V. A., Shakhovsky, A. M., Morgun, B. V., Matveeva, N. A. & Kuchuk, M. V. (2009). Obtaining of transgenic potato plants resistant to the herbicide basta, containing the gene cyp11A1 of cytochrome P450scc. Faktori eksperimental'noï evolûcìï organìzmìv, 7, pp. 192-196 (in Ukrainian).

Kyrpa-Nesmiyan, Т. М. (2017). Study of heterological expression of cyanobacterial desaturase genes in higher plants (Unpublished candidate thesis). Institute of Cell Biology and Genetic Engineering of the NAS of Ukraine, Kyiv, Ukraine (in Ukrainian).

Ovcharenko, O., Potrokhov, A., Sosnovska, D., Hoysyuk, Yu., Yaroshko, O., Shevchenko, T., Budzanivska, I., Rudas, V. & Kuchuk, M. (2023). Increased virus resistance in transgenic petunia with heterologous ZRNase II gene. JJBS, 16, No. 4, pp. 587-592 https://doi.org/10.54319/jjbs/160403

Slominski, A. T., Li, W., Kim, T.-K., Semak, I., Wang, J., Zjawiony, J. K. & Tuckey, R. C. (2015). Novel activities of CYP11A1 and their potential physiological significance. J. Steroid Biochem. Mol. Biol., 151, pp. 25-37. https://doi.org/10.1016/j.jsbmb.2014.11.010

Sakhno, L. O., Ostapchuk, A. M., Klochko, V. V. & Kuchuk, M. V. (2011). Fatty acid oil composition of canola plants expressing mammalian cytochrome P450SCC cyp11A1 gene. In: Advances in research and technology of rapeseed oil. Monograph–part III (pp. 55-59). Toruń: Wydawnictwo Naukowe Uniwersytetu Mikołaja Kopernika.

Sakhno, L. O. (2011). Seed germination features of canola plants expressing mammalian cytochrome P450SCC cyp11A1 gene. The Bulletin of Vavilov Society of Geneticists and Breeders of Ukraine. 9, No. 2, pp. 253-259 (in Russian).

Sakhno, L. O. (2013). Plant biomass increase: recent advances in genetic engineering. Вiopolym. Cell., 29, No. 6, pp. 443-453. https://doi.org/10.7124/bc.000838

Vasekina, A. V., Yershov, P. V., Reshetova, O. S., Tikhonova, T. V., Lunin, V. G. & Babakov, A. V. (2005). Vacuolar Na+/H+ antiporter from barley: Identification and response to salt stress. Biochemistry, 70, pp. 100-107. https:// doi.org/10.1007/s10541-005-0057-8

Roslyakova, T. V., Lasareva, E. M., Kononenko, N. V., Babakov, A. V. (2009). New isoform HvNHX3 of vacuolar Na+/H+ antiporter in barley: expression and immunolocalization. Biochemistry, 74, No. 5, pp. 549-556. https:// doi.org/10.1134/s0006297909050101

Jabeen, Z., Irshad, F., Hussain, N., Han, Y. & Zhang, G. (2022). NHX-type Na+/H+ antiporter gene expression

under different salt levels and allelic diversity of HvNHX in wild and cultivated barleys. Front. Genet., 12, 809988. https://doi.org/10.3389/fgene.2021.809988

Ovcharenko, O. O., Rudas, V. A., Shcherbak, N. L. & Kuchuk, M. V. (2018). Obtaining of transgenic potato plants (Solanum tuberosum L.) that contain antisense sequence of prolindehydrogenase gene. Faktori eksperimental'noï evolûcìï organìzmìv, 22, pp. 299-304 (in Ukrainian). https://doi.org/10.7124/FEEO.V22.965

Ye, Z-H. & Droste, D. L. (1996). Isolation and characterization of cDNAs encoding xylogenesis-associated and wounding-induced ribonucleases in Zinnia elegans. Plant Mol. Biol., 30, pp. 697-709. https://doi.org/10.1007/ BF00019005

Kyrpa-Nesmiian, T., Rudas, V., Ovcharenko, O., Osipenko, V., Kharhota, M. & Kuchuk, M. (2018). Studies on the adaptation of Solanum tuberosum plants expressing the desA gene to osmotic stress. Proceeding of the 2nd International Conference „Smart Bio“ (p. 72), Kaunas, Lithuania. Retrieved from http://icsb.vdu.lt/wp-content/ uploads/2018/05/ABSTRACT-BOOK-ICSB-2018.pdf

Law of Ukraine “On state regulation of genetic engineering activities and state control over the placing on the market of genetically modified organisms and products”. Vidomosti Verkhovnoyi Rady (VVR), 2023 (in Ukrainian). Retrieved from https://zakon.rada.gov.ua/laws/show/3339-20#Text

##submission.downloads##

Опубліковано

27.02.2026

Як цитувати

Овчаренко, О., Рудас, В., Щербак, Н., Кищенко, О., Моргун, Б., & Кучук, М. (2026). Ефективний метод генетичної трансформації картоплі та створення in vitro колекції її сортів з генами, що підвищують стійкість до абіотичних і біотичних стресів. Reports of the National Academy of Sciences of Ukraine, (1), 50–61. https://doi.org/10.15407/dopovidi2026.01.050