Особливості прояву радіаційно-індукованого ефекту свідка в лімфоцитах периферичної крові людини за дією астаксантину

Автор(и)

  • С.Р. Рушковський ННЦ “Інститут біології та медицини” Київського національного університету ім. Тараса Шевченка
  • Д.А. Курінний ДУ “Національний науковий центр радіаційної медицини НАМН України”, Київ
  • О.М. Демченко ДУ “Національний науковий центр радіаційної медицини НАМН України”, Київ
  • М.А. Пілінська ДУ “Національний науковий центр радіаційної медицини НАМН України”, Київ

DOI:

https://doi.org/10.15407/dopovidi2019.09.082

Ключові слова:

γ-опромінення, астаксантин, електрофорез окремих клітин, ефект свідка, культура лімфоцитів периферичної крові людини

Анотація

Методом електрофорезу окремих клітин (сomet assay) в нейтральних умовах досліджено вплив астаксантину на прояв ефекту свідка при сумісному культивуванні інтактних та опромінених in vitrо в дозі 0,5 Гр лімфоцитів периферичної крові людини. Показано значне зменшення виходу ДНК у культурах клітин-свідків порівняно з контролем. Це пояснюється наявністю в культурі лімфоцитів-свідків значної кількості пошкоджених клітин, у яких спрацював чекпоїнт на S фазі клітинного циклу. Астаксантин впливає на реалізацію ефекту свідка, зменшуючи кількість клітин, які зупиняють поділ на S фазі клітинного циклу, а та- кож збільшуючи частоту клітин з великим рівнем фрагментації ДНК.

Завантаження

Дані завантаження ще не доступні.

Посилання

Buonanno, M., de Toledo, S. M., Pain, D. & Azzama, E. I. (2011). Long-term consequences of radiation-induced bystander effects depend on radiation quality and dose and correlate with oxidative stress. Radiat Res., 175, No. 4, pp. 405-415. doi: https://doi.org/10.1667/RR2461.1

Shemetun, O. V. & Pilinska, M. A. (2007). Radiation-induced bystander effect. Cytol. Genet., 41, No. 4, pp. 66-71. doi: https://doi.org/10.3103/S0095452707040111

Ambati, R. R., Phang, S. M., Ravi, S. & Aswathanarayana, R. G. (2014). Astaxanthin: sources, extraction, stability, biological activities and its commercial applications. Mar. Drugs., 12, No. 1, pp. 128-152. doi: https://doi.org/10.3390/md12010128

Tago, Y., Fujii ,T., Wada, J., Kato, M., Wei, M., Wanibuchi, H. & Kitano, M. (2014). Genotoxicity and subacute toxicity studies of a new astaxanthin-containing Phaffia rhodozyma extract. J. Toxicol. Sci., 9, No. 3, pp. 373-382. doi: https://doi.org/10.2131/jts.39.373

Rushkovsky, S. R., Кurinnyi, D. А., Demchenko, O. M. & Pilinska, M. А. (2018). Radioprotective properties of astaxanthin: The impact on radiation induced chromosomal aberrations and DNA breaks in human lymphocytes in vitro. In Reeve, T. (Ed.). Ionizing radiation. Advances in research and applications (pp. 221-240). New York: Nova science publishers.

Kurinnyi, D. А., Rushkovsky, S. R., Demchenko, O. M., Dibska, O. B. & Pilinska, M. А. (2018). Comparison of the modifying effect of astaxanthin on the development of radiation-induced chromosomal instability in human lymphocytes exposed in vitro at different stages of the cell cycle. Cytol. Genet., 52, No. 5, pp. 368-373. doi: https://doi.org/10.3103/S0095452718050055

Afanasieva, K., Zazhytska, M. & Sivolob, A. (2010). Kinetics of comet formation in single-cell gel electrophoresis: loops and fragments. Electrophoresis, 31, pp. 512-519. doi: https://doi.org/10.1002/elps.200900421

Gyori, B. M., Venkatachalam, G., Thiagarajan, P. S., Hsu, D. & Clement, M. (2014). OpenComet: An automated tool for comet assay image analysis. Redox Biol., 2, pp. 457-465. doi: https://doi.org/10.1016/j.redox.2013.12.020

Rosner, B. (2015). Fundamentals of Biostatistics. 8th ed. Cengage Learning. 962 pp.

Olive, P. L. & Durand, R. E. (2005). Heterogeneity in DNA damage using the comet assay. Cytometry, 66, pp. 1-8. doi: https://doi.org/10.1002/cyto.a.20154

Burhans, W. C. & Weinberger, M. (2007). DNA replication stress, genome instability and aging. Nucleic Acids Res., 35 No. 22, pp. 7545-7556. doi: https://doi.org/10.1093/nar/gkm1059

Кurinnyi, D. А., Demchenko, O. M., Romanenko, M. G. & Rushkovsky, S. R. (2018). The impact of astaxanthin on the level of DNA methylation in irradiated in vitro human lymphocytes. Probl. Radiat. Med. Radiobiol., 23, pp. 235-245. doi: https://doi.org/10.33145/2304-8336-2018-23-235-245

Afanasieva, K. S., Chopei, M. I., Lozovik, A. V., Rushkovsky, S. R. & Sivolob, A. V. (2016). Redistribution of DNA loop domains in human lymphocytes under blast transformation with interleukin 2. Ukr. Biochem. J., 88, No. 6, pp. 45-51. doi: https://doi.org/10.15407/ubj88.06.045

##submission.downloads##

Опубліковано

24.04.2024

Як цитувати

Рушковський, С., Курінний, Д., Демченко, О., & Пілінська, М. (2024). Особливості прояву радіаційно-індукованого ефекту свідка в лімфоцитах периферичної крові людини за дією астаксантину . Доповіді Національної академії наук України, (9), 82–87. https://doi.org/10.15407/dopovidi2019.09.082

Статті цього автора (авторів), які найбільше читають