Порівняльна характеристика тривимірного та моношарового культивування перещеплюваної лінії фібробластів L 929

Автор(и)

  • А.І. Моісєєв Інститут проблем кріобіології і кріомедицини НАН України, Харків
  • Г.А. Божок Інститут проблем кріобіології і кріомедицини НАН України, Харків
  • О.Л. Горіна Інститут проблем кріобіології і кріомедицини НАН України, Харків

DOI:

https://doi.org/10.15407/dopovidi2019.08.093

Ключові слова:

моношарове і об’ємне культивування, проліферативний потенціал, речовини білково пептидної природи, фібробласти

Анотація

Виконано порівняльне дослідження функціонального і метаболічного потенціалу фібробластів клітинної лінії L 929 за умов моношарового (2D) і об’ємного (3D) культивування. З’ясовано, що спосіб культивування фібробластів впливає на їхню життєздатність і проліферативний потенціал. Зокрема, після об’ємного культивування фібробластів протягом 7 діб виявлено, що кількість життєздатних клітин та їхній проліфера тивний потенціал вірогідно (р < 0,05) перевищували аналогічні показники після моношарового культивування.

За даними гель-проникної хроматографії встановлені достовірні відмінності за кількісним та якісним складом речовин білково пептидної природи в середовищах культивування клітин у 2D і 3D форматах. Особливу увагу привертають результати щодо розбіжності за кількістю пептидів у діапазоні молекулярних мас 705—1607 Да у середовищі об’ємного культивування, що може бути наслідком активного синтезу ростових факторів. Отримані результати свідчать про істотний вплив об’ємного (3D) культивування на синтетичні і морфофункціональні показники фібробластів клітинної лінії L 929 порівняно з 2D форматом.

Завантаження

Посилання

Kozina, K. V., Saburina, I. N., Gorkun, A. A., Zurina, I. N., Kosheleva, N. V., Volkova, E. N. & Morozov, S. G. (2015). Comparative study of p199 effect on 2D and 3D cultures of human dermal fibroblasts. Pathogenesis, No. 4, pp. 3440 (in Russian).

Kosheleva, N. V., Il’ina, I. V., Kozhina, K. V., Zurina, I. V., Roskova, A. E., Gorkun, A. A., Ovchinnikov, A. V., Agranat, M. B., Morozov, S. G. & Saburina, I. N. (2017). Cellular model based on laser microsurgery ofcells spheroids to study the repair process. Ontogenez, 48, No. 1, pp. 6372 (in Russian). doi: https://doi.org/10.7868/S0475145017010074

Plaksina, K. M., Sidorenko, O. S., Legach, Y. I., Kovalenko, I. F. & Bozhok, G. A. (2017). Expression of bIIItubulin in the neonatal adrenal cell culture: comparison of monolayer and 3Dculture. The Journal of V.N. Karazin Kharkiv National University, Ser. Biology, Iss. 28, pp. 7686 (in Ukrainian). https://doi.org/10.26565/207554572017289

Bozhok, G. A., Moisieiev, A. I., Gorina, O. L. & Moisieieva, N. N. (2018, April). The effect of sowing concentration of fibroblasts on the morphofunctional properties of 3D culture. Proceedings of the International Research and Practical Conference The development of medical sciences: problems and solutions. (pp. 135138), Brno.

Armitage, W. J. & Mazur, P. (1984). Osmotic tolerance of human granulocytes. Am. J. Physiol., 247, No. 5, pp. 373381. doi: https://doi.org/10.1152/ajpcell.1984.247.5.C373

Denker, S. P. & Barber, D. L. (2002). Cell migration requires both ion translocation and cytoskeletal anchoring by the NaH exchanger NHE1. J. Cell Biol., 159, No. 6, pp. 10871096. doi: https://doi.org/10.1083/jcb.200208050

Belous, À. Ì., Mokhamed, À. N., Semenchenko, A. Yu. & Yavorskaya, V. A. (1997). Research of level of peptides of “middle molecules” in plasma of blood of patients with the different forms of violations of cerebral circulation of blood. Dopov. Nac. akad. nauk Ukr., No. 8, pp. 177181 (in Russian).

Cheng, N. C., Wang, N. C., Cheng, S. & Young, T. H. (2012). The influence of spheroid formation of human adiposederived stem cells on chitosan films on stemness and differentiation capabilities. Biomaterials, 33, Iss. 6, pp. 17481758. doi: https://doi.org/10.1016/j.biomaterials.2011.11.049

Sato, R., Yasukawa, T., Kacza, J., Eichler, W., Nishiwaki A., Iandiev, I., Ohbayashi, M., Kato, A., Yafai, Y., Bringmann, A., Takase, A., Ogura, Y., Seeger, J. & Wiedemann, P. (2013). Threedimensional spheroidal culture visualization of membranogenesis of Bruch’s membrane and basolateral functions of the retinal pigment epithelium. Investig. Ophthalmol. Vis. Sci., 54, No. 3, pp. 17401749. doi: https://doi.org/10.1167/iovs.12-10068

Kubatiev, A. A., Zurina, I. M., Kosheleva, N. V., Gorkun, A. A., Saburina, I. N. & Repin, V. S. (2015). From 2D cell phenotypes to 3D live highcontent imaging: new ways to windows. J. Cytol. Histol., 6, No. 6. https://doi.org/10.4172/21577099.1000378

Antoni, D., Burckel, H., Josset, E. & Noel, G. (2015). Threedimensional cell culture: a breakthrough in vivo. Int. J. Mol. Sci., 16, No. 3, pp. 5517–5527. doi: https://doi.org/10.3390/ijms16035517

Sangmyung, R. (2009). Fibroblasts in three dimensional matrices: cell migration and matrix remodeling. Exp. Mol., Med, 41, No. 12, pp. 858865. doi: https://doi.org/10.3858/emm.2009.41.12.096

Eleanor, K. & Przyborski, S. (2015). Advances in 3D cell culture technologies enabling tissuelike structures to be created in vitro. J. Anat., 227, No. 6, pp. 746756. doi: https://doi.org/10.1111/joa.12257

##submission.downloads##

Опубліковано

21.04.2024

Як цитувати

Моісєєв, А., Божок, Г., & Горіна, О. (2024). Порівняльна характеристика тривимірного та моношарового культивування перещеплюваної лінії фібробластів L 929 . Доповіді Національної академії наук України, (8), 93–101. https://doi.org/10.15407/dopovidi2019.08.093