Особливості калусогенезу контрастних за вмістом антоціанів сортів Lactuca sativa L

Автор(и)

  • Ю.В. Приймак ННЦ “Інститут біології та медицини” Київського національного університету ім. Тараса Шевченка
  • О.Є. Смірнов ННЦ “Інститут біології та медицини” Київського національного університету ім. Тараса Шевченка
  • Н.Ю. Таран ННЦ “Інститут біології та медицини” Київського національного університету ім. Тараса Шевченка
  • В.В. Швартау Інститут фізіології рослин і генетики НАН України, Київ

DOI:

https://doi.org/10.15407/dopovidi2020.07.094

Ключові слова:

Lactuca sativa L., калусогенез, Лоло Біонда, Лоло Росса, первинний калус

Анотація

Апробовано підбір умов для введення в культуру in vitro двох контрастних за вмістом антоціанів сортів салату посівного (Lactuca sativa L.) — Лоло Біонда (зелений) та Лоло Росса (червоний). Проведено порівнян ня впливу фітогормонального співвідношення і обробки стерилізуючими агентами на індукцію калусо-генезу, площу, консистенцію та структуру шеститижневих первинних калусів обох сортів. Встановлено, що за умов вирощування на середовищах зі співвідношенням регуляторів росту: 6-бензиламінопурин (БАП) — 0,3 мг/л, нафтилоцтова кислота (НОК) — 2 мг/л, 2,4-дихлорфеноксіоцтова кислота (2,4-Д) — 0,2 мг/л та БАП — 10 мг/л, НОК — 0,5 мг/л відбувається стимуляція калусогенезу з експлантів сім’ядольних листків асептичних проростків обох сортів. Значну стимуляцію росту первинних калусів сорту Лоло Росса зафіксовано у варіанті стерилізації експлантів хлоридом ртуті і гіпохлоритом натрію. Досліджено гетерогенність клітинного складу калусної тканини і можливість отримання пухкого та компактного калусів обох сортів.

Завантаження

Дані завантаження ще не доступні.

Посилання

FAOSTAT. Lettuce and chicory crop production. Food and Agriculture Organization Statistical Division (2014). Retrieved from http://faostat3.fao.org/faostat-gateway/go/to/search/lettuce

Cheng, D. M., Pogrebnyak, N., Kuhn, P., Krueger, C. G., Johnson, W. D. & Raskin, I. (2014). Development and phytochemical characterization of high polyphenol red lettuce with anti-diabetic properties. PLoS One, 9, e 91571. https://doi.org/10.1371/journal.pone.0091571

Armas, I., Pogrebnyak, N. & Raskin, I. (2017). A rapid and efficient in vitro regeneration system for lettuce (Lactuca sativa L.). Plant Methods, 13, pp. 58. https://doi.org/10.1186/s13007-017-0208-0

Vanjildorj, E., Bae, T.-W., Riu, K.-Z., Kim, S.-Y. & Lee, H.-Y. (2005). Overexpression of Arabidopsis ABF3 gene enhances tolerance to drought and cold in transgenic lettuce (Lactuca sativa). Plant Cell, Tissue Organ. Cult., 83, pp. 41-50. https://doi.org/10.1007/s11240-005-3800-3

Xinrun, Z. & Conner, A. J. (1992). Genotypic effects on tissue culture response of lettuce cotyledons. J. Genet. Breed., 46, pp. 287-290.

Ampomah-Dwamena, C., Conner, A. J. & Fautrier, A. G. (1997). Genotypic response of lettuce cotyledons to regeneration in vitro. Sci. Hortic. (Amsterdam), 71, pp. 137-145. https://doi.org/10.1016/S0304-4238(97)00098-8

Kanamoto, H., Yamashita, A., Asao, H., Okumura, S., Takase, H., Hattori, M., Yokota, A. & Tomizawa, K.-I. (2006). Efficient and stable transformation of Lactuca sativa L. cv. Cisco (lettuce) plastids. Transgenic Res., 15, pp. 205-217. https://doi.org/10.1007/s11248-005-3997-2

Chang, C. M., Penna, S. & Bhagwat, S. G. (2012). Callus induction and plant regeneration from different Triticum species. Asian Australas. J. Plant Sci. Biotechnol., 6, Sp. Iss. 1, pp. 56-62.

Konotop, Y. O., Karpets, L. A., Zinchenko, A. V., Lopatko, S. K., Kovalenko, M. S. & Smirnov, O. E. (2019). Influence of citrate-stabilized Cu- and Mn-nanocolloids on the growth and proliferative activity of Allium cepa L. apical meristems. Dopov. Nac. akad. nauk Ukr., No. 1, pp. 86-92 (in Ukrainian). https://doi.org/10.15407/dopovidi2019.01.086

Mohebodini, M., Javaran, M. J., Mahboudi, F. & Alizadeh, H. (2011). Effects of genotype, explant age and growth regulators on callus induction and direct shoot regeneration of lettuce (Lactuca sativa L.). Aust. J. Crop Sci., 5, pp. 92-95.

Maina, S. M., Emongor Q., Sharma K. K., Gichuki S., Gathaara M. & de Villiers S. M. (2010). Surface sterilant effect on the regeneration efficiency from cotyledon explants of groundnut (Arachis hypogea L.) varieties adapted to Eastern and Southern Africa. Afr. J. Biotechnol., 9, No. 20, pp. 2866-2871.

Tyukavin, G. B. (2007). Carrot biotechnology. Moscow: VNIISSOK (in Russian).

Chiavegatto, R. B., Castro, A. H. F., Marçal, M. G., Pádua, M. S., Alves, E. & Techio, V. H. (2015). Cell viability, mitotic index and callus morphology of Byrsonima verbascifolia (Malpighiaceae). Trop. Plant Biol., 8, No. 3-4, pp. 87-97. https://doi.org/10.1007/s12042-015-9150-3

Hovhannisyan, N. A., Mkrtumyan, M. K. & Yesayan, A. G. (2008). Cytogenetic description of Nerium olean der callus culture. Biol. J. Armenia, 60, No. 1-2, pp. 130-134 (in Russian).

Tikhomirova, L. I., Bazarnova, N. G. & Sinitsyna, A. A. (2018). Histochemical study of xylem cells in in vitro culture of Iris sibirica L. Russ. J. Bioorg. Chem., 44, No. 7, pp. 860-869. https://doi.org/10.1134/S1068162018070129

##submission.downloads##

Опубліковано

28.03.2024

Як цитувати

Приймак, Ю. ., Смірнов, О. ., Таран, Н. ., & Швартау, В. . (2024). Особливості калусогенезу контрастних за вмістом антоціанів сортів Lactuca sativa L . Reports of the National Academy of Sciences of Ukraine, (7), 94–100. https://doi.org/10.15407/dopovidi2020.07.094

Номер

№ 7 (2020): Доповіді Національної академії наук України

Розділ

Біологія

Ліцензія

Авторське право (c) 2023 Доповіді Національної академії наук України

Creative Commons License

Ця робота ліцензується відповідно до Creative Commons Attribution-NonCommercial 4.0 International License.